rm(list = ls()) load(file = "step2output.Rdata") #差异分析,用limma包来做 #需要表达矩阵(exp)和分组信息(group_list),不需要改 library(limma) design=model.matrix(~group_list) #分组信息为二分类。 fit=lmFit(exp,design) #线性拟合。 fit=eBayes(fit) #统计计算。 deg=topTable(fit,coef=2,number = Inf) #得到每个探针的logFC和P.Value,并按P.Value从小到大排序。 #为deg数据框添加几列 #1.加probe_id列,把行名变成一列 library(dplyr) deg <- mutate(deg,probe_id=rownames(deg)) #给数据框新增一列,列名为probe_id,值为数据框的行名。 #使用tidyverse的函数处理数据框会丢失行名。 #deg$probe_id=rownames(deg) #此行代码新增列的功能与上一行相同,但不会丢失行名。 #以上两种代码运行任意一种均可。 head(deg) #查看前6行。 #2.加symbol列,火山图要用 deg <- inner_join(deg,ids,by="probe_id") #按probe_id匹配deg和ids,保留匹配的行,并连接deg和ids的列。 #inner_join不会改变行的顺序,行仍按deg的顺序排列。 head(deg) #查看前6行。 #按照symbol列去重复 deg <- deg[!duplicated(deg$symbol),] #消除多个探针(probe_id)对应同一个基因(symbol)的情况。 #重复的基因(symbol)只保留其第一次出现的探针(probe_id)。 #3.加change列,标记上下调基因 logFC_t=1 #logFC的预定值,可修改。 P.Value_t = 0.01 #P.Value的预定值,可修改。 k1 = (deg$P.Value < P.Value_t)&(deg$logFC < -logFC_t) #寻找下调基因。 k2 = (deg$P.Value < P.Value_t)&(deg$logFC > logFC_t) #寻找上调基因。 change = ifelse(k1,"down",ifelse(k2,"up","stable")) #标记上下调基因。上调基因为up,下调基因为down,其余基因为stable。 deg <- mutate(deg,change) #将标记添加到deg中成为新的一列。列名为change,值为up,down,stable。 #4.加ENTREZID列,用于富集分析 #(symbol转entrezid,然后inner_join) library(ggplot2) library(clusterProfiler) library(org.Hs.eg.db) #人类物种的R包(.db) #其他物种:http://bioconductor.org/packages/release/BiocViews.html#___OrgDb s2e <- bitr(deg$symbol, #需要转换的基因id(symbol)列。 fromType = "SYMBOL", #需要转换的原基因类型,需大写。 toType = "ENTREZID", #需要转换的目标基因类型,需大写。 OrgDb = org.Hs.eg.db) #人类。 #s2e为两列的数据框,列名为SYMBOL和ENTREZID。 deg <- inner_join(deg,s2e,by=c("symbol"="SYMBOL")) #按symbol和SYMBOL匹配deg和s2e,保留匹配的行,并连接deg和s2e的列。 save(group_list,deg,logFC_t,P.Value_t,file = "step4output.Rdata")